RIPA裂解液(強(qiáng)，不含抑制劑，不含螯合劑)
● 產(chǎn)品包裝：
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產(chǎn)品編號
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產(chǎn)品名稱
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包裝
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說明書
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RL0120F
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RIPA裂解液(強(qiáng)，不含抑制劑，不含螯合劑)
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100 ml
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1份
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● 產(chǎn)品簡介：
RIPA裂解液(RIPA Lysis
Buffer)是一種傳統(tǒng)的細(xì)胞組織快速裂解液。RIPA裂解液裂解得到的蛋白樣品可以用于常規(guī)的Western、IP等。RIPA的本意是Radio Immunoprecipitation Assay。RIPA裂解液的配方有很多種，根據(jù)其裂解液的強(qiáng)度大致可以分為強(qiáng)、中、弱三類。該RIPA裂解液(強(qiáng))的主要成分為50 mM Tris (pH 7.4)，150 mM NaCl，1% Triton
X-100，1%
sodium deoxycholate，0.1% SDS，不含蛋白酶抑制劑，不含磷酸酶抑制劑，不含螯合劑如EDTA或EGTA，可適用于明膠酶譜實驗的蛋白提取。使用前根據(jù)實驗需要添加蛋白酶抑制劑或磷酸酶抑制劑以及EDTA或EGTA。
用該RIPA裂解液裂解得到的蛋白樣品，可以用BCA蛋白濃度測定試劑盒測定蛋白濃度。由于含有較高濃度的去垢劑，不能用Bradford法測定蛋白濃度。
● 保存、效期及運(yùn)輸：
-20℃保存，有效期一年，濕冰運(yùn)輸。
● 注意事項：
1.為取得最佳的使用效果，盡量避免過多的反復(fù)凍融?？梢赃m當(dāng)分裝后使用。需自備PMSF。裂解樣品的所有步驟都需在冰上或4℃進(jìn)行。
2. RIPA裂解液的裂解產(chǎn)物中經(jīng)常會出現(xiàn)一小團(tuán)透明膠狀物，屬常見現(xiàn)象。該透明膠狀物為含有基因組DNA等的復(fù)合物。在不檢測與基因組DNA結(jié)合特別緊密的蛋白的情況下，可以直接離心取上清用于后續(xù)實驗；如果需要檢測和基因組結(jié)合特別緊密的蛋白，則可以通過超聲處理打碎打散該透明膠狀物，隨后離心取上清用于后續(xù)實驗。如果檢測一些常見的轉(zhuǎn)錄因子，例如NF-kappaB、p53等時，通常不必進(jìn)行超聲處理，就可以檢測到這些轉(zhuǎn)錄因子。
● 使用說明：
1. 準(zhǔn)備RIPA裂解液：
融解RIPA裂解液，混勻；取適當(dāng)量的裂解液，在使用前數(shù)分鐘內(nèi)加入1/100體積的100 mM PMSF，使PMSF的最終濃度為1 mM。
注：進(jìn)行明膠酶譜實驗提取蛋白樣品時，不要添加EDTA或EGTA，以免螯合掉MMP活性需要的二價陽離子；蛋白酶抑制劑也要選擇性添加，不要添加金屬蛋白酶抑制劑，可以添加PMSF（絲氨酸蛋白酶抑制劑）。
2. 細(xì)胞蛋白提?。?/b>
2.1 貼壁細(xì)胞：去除培養(yǎng)液，加入適量1×PBS，輕柔漂洗一遍，不要擾動貼壁細(xì)胞。按照6孔板每孔加入100-200 μl裂解液的比例加入裂解液，移液器吹打數(shù)下，使裂解液和細(xì)胞充分接觸，冰上裂解細(xì)胞5分鐘，用細(xì)胞刮刀刮下細(xì)胞收集于1.5 ml離心管中，冰上繼續(xù)裂解15分鐘，間歇混勻。
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培養(yǎng)板規(guī)格/培養(yǎng)皿表面積
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細(xì)胞量
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RIPA推薦使用量
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100 mm培養(yǎng)皿
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1.5×107
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0.5-1 ml
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60 mm培養(yǎng)皿
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5×106
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0.25-0.5 ml
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35 mm培養(yǎng)皿
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2×106
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0.2-0.4 ml
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6孔板
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2.5×106
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100-200 μl
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24孔板
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5×105
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100-150 μl
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96孔板
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1×105
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50-100 μl
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2.2 懸浮細(xì)胞：450 g
4℃ 離心5 min收集細(xì)胞；用適量1×PBS重懸細(xì)胞，450 g 4℃ 離心5 min收集細(xì)胞；重復(fù)漂洗細(xì)胞一次；按照細(xì)胞沉淀體積（PCV）20 μl加入200 μl RIPA的比例加入RIPA，混勻細(xì)胞沉淀，冰浴處理15分鐘，間歇混勻。
注：2×106 Jurkat細(xì)胞，其細(xì)胞沉淀體積（PCM，Packed Cell Volume）大約為20 μl。
2.3 裂解細(xì)胞：
裂解混合物超聲波處理（超聲條件根據(jù)儀器調(diào)整，建議條件為）；如沒有超聲破碎儀，可以使用注射器用27G針頭處理裂解物10-15次，以徹底裂解細(xì)胞。冰浴處理15分鐘。
注：裂解中細(xì)胞會釋放出變性的核酸，呈團(tuán)狀粘稠透明樣，如不進(jìn)行超聲或針頭裂解處理，會導(dǎo)致裂解物非常粘稠，大大降低蛋白提取的得率和純度。
2.4 離心收集上清：
充分裂解后，4℃ 16000
g離心10分鐘，取上清，即可進(jìn)行后續(xù)的PAGE、Western和免疫沉淀等操作。
3. 組織樣品蛋白提取：
3.1 手術(shù)切除的組織塊迅速置于預(yù)冷的生理鹽水中，漂洗數(shù)次，洗凈組織血跡，用濾紙吸
干組織表面液體，將組織切成細(xì)小的碎片。
3.2 按照每20 mg組織加入200 μl裂解液的比例加入裂解液。(如果裂解不充分可以適當(dāng)添加更多的裂解液，如果需要高濃度的蛋白樣品，可以適當(dāng)減少裂解液的用量。)
3.3 用玻璃勻漿器冰浴勻漿5-10次，收集勻漿后的裂解混合物，超聲波處理（超聲條件根據(jù)儀器調(diào)整，建議條件為）；如沒有超聲破碎儀，可以使用注射器用27G針頭處理裂解物10-15次，以徹底裂解細(xì)胞。裂解物冰浴處理15分鐘。
注：裂解中細(xì)胞會釋放出變性的核酸，呈團(tuán)狀粘稠透明樣，如不進(jìn)行超聲或針頭裂解處理，會導(dǎo)致裂解物非常粘稠，大大降低蛋白提取的得率和純度。
3.4 充分裂解后，4℃ 16000
g離心10分鐘，取上清，即可進(jìn)行后續(xù)的PAGE、Western和免疫沉淀等操作。